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细胞周期
利用流式细胞术进行细胞周期检测是一种常见的研究手段。本文详细介绍了不同检测方法所用的试剂和操作流程,以供参考。
1. 活细胞中的DNA含量分析
研究活细胞中的DNA含量和在各细胞周期的分布有多种应用场景,如在物理、化学或生物因素影响下检测细胞生长状态、监测细胞凋亡以及研究肿瘤状况和抑制基因的机制。活细胞通常处于三个主要的细胞周期:G0/G1期(每个细胞都有一组成对染色体)、S期(DNA合成期,DNA含量不等)和G2/M期(细胞分裂之前,每个细胞都有两组完整的成对染色体)[1-4]。DNA含量可以由DNA特异性荧光染料进行测量,这些染料的发射激光信号强度与DNA含量成正比,然后流式分析可以得出不同细胞周期阶段的分布直方图。通常使用非通透性核酸染料对固定或破膜的细胞进行分析,但也可以使用通透性的核酸染料对活细胞进行分析。赛默飞提供很多用于固定细胞的染料,还有一些通透性的核酸染料可供选择。
Vybrant™ DyeCycle™ Violet stain染料是一种DNA特异结合、细胞膜渗透性染料,它可与双链DNA结合后发出荧光,由紫激光激发、可用于分析活细胞中的DNA含量。Vybrant DyeCycle Violet stain染料不仅兼容被广泛配置的的紫激光(图1)激发,而且也可由紫外激光(UV)激发,发射波长为440 nm左右。
Vybrant DyeCycle Violet stain染色实验方案十分简单,只需将Vybrant DyeCycle Violet stain染料孵育悬浮细胞,并直接检测其荧光强度,无需离心或其他步骤。这种活细胞染料的染色也兼容同时检测细胞表型,甚至可根据DNA含量进行细胞分选。啮齿动物和人类干细胞会排出Vybrant DyeCycle Violet stain染料。因此可以通过紫光激发实现侧群细胞(Side popμLation, SP)分析或分选[5]。
光谱特征
Vybrant DyeCycle Violet stain染料的荧光激发和发射光谱如图1所示,这个光谱是在样本中通过Vybrant DyeCycle Violet stain染料与DNA结合得到的。
Vybrant DyeCycle Violet 染料/DNA结合物的荧光激发波峰和发射波峰分别为369 nm和437 nm。
图1.Vybrant DyeCycle Violet stain染料在TrisBorate-EDTA (TBE) Buffer(pH 8.3)
与DNA结合后的荧光激发光谱和发射光谱
材料
表1. 产品信息
产品 | 规格 | 浓度 | 储存* | 稳定性 |
Vybrant DyeCycleViolet stain染料(#V35003) | 200 μL | 5 mM溶液溶于去离子水 |
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若按指示储存,该试剂盒至少可稳定储存6个月。 |
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实验次数:基于1 mL测试体积,试剂盒可用于200次左右流式实验。
荧光激发/发射波峰:与DNA结合后,Vybrant DyeCycle Violet stain染料为369/437 nm。
需要但未提供的材料
- 细胞和培养基
- 流式管
实验方案
以下优化后的染色实验方案使用Jurkat细胞(人白血病T细胞系)在37°C,含10%胎牛血清(#FBS141)的完全RPMI培养基(#609043)中进行染色。实验方案适用于多数细胞类型。测试样本包含1×106个细胞/mL。实验中所用的培养基或缓冲液、细胞密度、细胞类型或其他因素都可能会对染色有影响,因此在预实验中,根据细胞类型、缓冲液和实验条件,尝试使用梯度染料浓度,从而确定最佳的染色实验方案。在每组实验中,流式实验样本应使用相同细胞数量,避免因样本间细胞数量不同引起荧光信号的显著差异。
如果Vybrant DyeCycle Violet stain染料与其他染料组合完成流式多色实验,请先按说明指示将其他染料加到样本中,包括洗涤步骤。Vybrant DyeCycle Violet stain染料是在上机前最后添加,并且在上样分析前不要洗涤或固定样本。
常规事项
- 为了更好检测DNA含量来分析细胞周期,需注意以下事项:若无培养基,建议使用Hanks' Balanced Slat Solution (HBSS)(#14175095),而非磷酸盐缓冲液。同时在整个实验中,请勿使用玻璃容器。
- 染色前,去除细胞悬液中的团块和杂质。在添加Vybrant DyeCycle Violet stain染料后,在37°C下孵育细胞,请勿洗涤或固定细胞。
- 使用细胞活性鉴定染料去除死细胞,比如SYTOX™ Green(# S34860)、SYTOX™ Red(#S34859)或SYTOX™ AADvanced™(#S10274)细胞活性染料或者LIVE/DEAD™可固定细胞活性染料(如Fixable Green(#L34969)/Red(# L34971)/ Far-Red(#L34974)/ Near-IR kit(#L34994 / L34982)。
- 提前确认流式细胞仪性能正常,且根据实验目的,建议在低流速下收集到足够的流式数据。在数据分析中,通过设门排除团块、杂质及死细胞,确保数据准确性;在分析DNA含量时,采用线性(Linear)信号查看及分析。还有,Alexa Fluor 488通道和PE通道可能需要补偿调节。
- 人类和啮齿动物干细胞会分泌出Vybrant DyeCycle Violet染料,这是侧群细胞(Side population, SP)的检测原理;可以使用维拉帕米(Verapamil)、烟曲霉毒素C(Fumitermorgin C)或其他药物阻断分泌过程,可以更加准确地分析这些干细胞中的DNA含量。
Vybrant DyeCycle Violet stain染色实验方案
以下实验方案经优化,用于将完全培养基(RPMI #609043/ 10%胎牛血清 #FBS141)中悬浮培养的Jurkat细胞在37°C下进行Vybrant DyeCycle Violet stain染色。
1.从冰箱中取出Vybrant DyeCycle Violet stain(#V35003)染料,恢复至室温。
2.用完全培养基调整细胞浓度为1×106 个细胞/mL,按每管1 mL细胞悬液加到流式管中。
3.在每管中加入1 μL的Vybrant DyeCycle Violet stain染料并充分混匀,使染料终浓度为5 μM。
4.在37°C下避光孵育30分钟。直至上机采集数据前将细胞始终保持在37°C条件。
5.不要洗涤或固定样本,直接上机检测样本。在流式细胞仪上,使用405 nm左右激发波长和440 nm左右发射波峰分析样本(图2),Vybrant DyeCycle Violet stain染料也可由紫外激光(UV)激发。
图2. Vybrant DyeCycle Violet stain染料染色Jurkat活细胞后得出DNA含量分布直方图
G0/G1和G2/M周期的波峰被S期分隔开。该染料由紫光405 nm激发且使用440/40 nm带通滤光片检测
参考文献
1.Current Protocols in Cytometry, 7.0.1–7.27.7 (2004)
2.Practical Flow Cytometry, 4th Ed., Shapiro HM,Ed. (2003)
3.Methods Mol Biol 281, 301 (2004)
4.Cytometry A 58, 21 (2004)
5.Stem Cells 25, 1029 (2007).
2. 固定细胞的DNA含量分析
流式细胞术分析核酸是一种常见的应用。DNA含量的检测可以用来研究不同细胞群体的细胞周期和DNA倍体。在特定细胞群中,有三个主要细胞周期:G0/G1期(每个细胞含有一套成对的染色体)、S期(DNA合成期,DNA含量不等)和G2/M期(细胞分裂之前,每个细胞含有两套成对的染色体)[1-4]。可以使用DNA荧光染料对DNA进行检测,信号强度与DNA含量成正比。然后对这些染色细胞群进行流式细胞分析,获得各个细胞周期的直方图。
单参数DNA含量分析是一种成熟的检测方法,广泛用于肿瘤学、细胞生物学和分子生物学的研究。通过流式细胞术可实现多色细胞周期研究,可以替代488nm激光器使用其他激光器检测细胞周期,这样使得常用的488nm激光器用于其他靶标的检测。FxCycle™ Violet染料(4',6-二脒基-2-苯基吲哚二醋酸盐)可被常见的紫色激光激发,也可被紫外UV激光激发。在紫色激光上检测DNA含量,则可以将常用的488 nm激光用于检测其他指标,例如细胞周期蛋白、细胞周期蛋白依赖性激酶、细胞周期检查点、核蛋白和增殖标记物。FxCycle™ Violet染料优先结合dsDNA;这可能与小沟中的AT碱基对相关[5]。FxCycle™ Violet染料与dsDNA结合,可产生约20倍强度的荧[6]。
为了长期储存, 5瓶100 μg的固体染料可以在2–6°C下储存;为方便起见,小瓶溶于去离子水的储备液也在2–6°C下储存。
开始之前
实验中需要但未提供的试剂
- 去离子水
- 固定剂(例如酒精或甲醛)
- 破膜剂(例如Triton® X-100 #HFH10)
- 缓冲液,如磷酸盐缓冲液(PBS # 201054)
制备储备液
向染料瓶中加入100 μL去离子水,浓度为1 mg/mL的FxCycle™ Violet染料储备液。充分混匀。于2–6°C下避光储存,此条件下FxCycle™ Violet染料至少可稳定储存6个月。
光谱特性
FxCycle™ Violet染料的荧光激发和荧光发射光谱如图1所示。与dsDNA结合后,荧光激发和发射波长分别为358/461 nm。FxCycle™ Violet染料可被流式细胞仪上常用的405 nm紫色激光或者UV激光激发。
图1.FxCycle™ Violet染料与dsDNA结合后的荧光激发和发射光谱。
实验方案
以下方案使用Jurkat T细胞系研发,但该方案适用于其他细胞类型。固定破膜剂、细胞密度、细胞类型变化和其他因素都可能影响染色效果。
在预实验中,应对特定细胞类型进行测试,梯度测试不同的染料浓度以获得最佳的染色浓度和实验条件。在进行细胞染色之前,应尽量确保去除细胞中的固定剂,但如有特殊需要,可以在添加破膜剂的同时加入FxCycle™ Violet染料进行染色。对于同一组实验,每个流式细胞样本的细胞数量应保持一致,因为样本间细胞数量的差异会导致荧光信号的显著差异。
如果用FxCycle™ Violet染料结合其他染料标记的指标进行多色分析,请先按照其他指标的生产商的说明(包括洗涤步骤)染色其他染料。FxCycle™ Violet染色应是最后一个步骤,并且在流式细胞分析之前不要洗涤样本。
常规事项
为使DNA含量细胞周期分析达到最佳效果,请注意以下事项:
- 染色前去除细胞悬液中的细胞团块
- 在使用前先确认流式细胞仪的功能正常
- 应用荧光通道的线性参数(Linear)放大信号检测DNA含量
- 在低流速下进行采集
- 分析并采集足量的事件(events)用于数据分析
- 当对细胞DNA含量分析细胞周期时, FxCycle™ Violet染料使用前必须先固定细胞
染色步骤
1.收集细胞样本。
2.根据经验证的最佳方法固定细胞。
3.洗涤细胞。在进行细胞染色之前,尽量将样本中的固定试剂去除干净。
4.使用合适的缓冲液,调节细胞样本浓度为1×106 个细胞/mL。
5.制备流式细胞样本,使每个样本含有1 mL细胞悬液。如果实验需要可以选择性地加入破膜试剂进行破膜处理。
6.向每个样本加入1μL FxCycle™ Violet(货号F10347)染料并充分混匀。
7.样本在室温或2–6°C下避光孵育30分钟。
8.使用流式细胞仪分析样本:使用405nm激光器和450/50带通或同等滤光片收集信号。
9.图2显示了使用FxCycle™ Violet染料进行DNA含量细胞周期分析获得的结果示例。
图2.HL-60早幼粒细胞经FxCycle™ Violet染料染色后获得的DNA含量直方图。HL-60细胞用酒精固定过夜、洗涤,然后重悬于0.1% Triton® X-100/PBS/1% BSA中,最后在室温下用FxCycle™ Violet染料染色30分钟。S期分布位于G0/G1和G2/M期直方图之间。使用450/50带通滤光片在405 nm激发光下进行分析。