诺为生物欢迎您的到来!客服电话: 010-57438396
您的位置:

文章目录

1. 活细胞中的DNA含量分析
2. 固定细胞的DNA含量分析

细胞周期

利用流式细胞术进行细胞周期检测是一种常见的研究手段。本文详细介绍了不同检测方法所用的试剂和操作流程,以供参考。

1. 活细胞中的DNA含量分析

 

研究活细胞中的DNA含量和在各细胞周期的分布有多种应用场景,如在物理、化学或生物因素影响下检测细胞生长状态、监测细胞凋亡以及研究肿瘤状况和抑制基因的机制。活细胞通常处于三个主要的细胞周期:G0/G1期(每个细胞都有一组成对染色体)、S期(DNA合成期,DNA含量不等)和G2/M期(细胞分裂之前,每个细胞都有两组完整的成对染色体)[1-4]。DNA含量可以由DNA特异性荧光染料进行测量,这些染料的发射激光信号强度与DNA含量成正比,然后流式分析可以得出不同细胞周期阶段的分布直方图。通常使用非通透性核酸染料对固定或破膜的细胞进行分析,但也可以使用通透性的核酸染料对活细胞进行分析。赛默飞提供很多用于固定细胞的染料,还有一些通透性的核酸染料可供选择。

 

Vybrant™  DyeCycle™  Violet  stain染料是一种DNA特异结合、细胞膜渗透性染料,它可与双链DNA结合后发出荧光,由紫激光激发、可用于分析活细胞中的DNA含量。Vybrant DyeCycle Violet stain染料不仅兼容被广泛配置的的紫激光(图1)激发,而且也可由紫外激光(UV)激发,发射波长为440 nm左右。

 

Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染色实验方案十分简单,只需将Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料孵育悬浮细胞,并直接检测其荧光强度,无需离心或其他步骤。这种活细胞染料的染色也兼容同时检测细胞表型,甚至可根据DNA含量进行细胞分选。啮齿动物和人类干细胞会排出Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料。因此可以通过紫光激发实现侧群细胞(Side popμLation, SP)分析或分选[5]。

 

光谱特征

 

Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料的荧光激发和发射光谱如图1所示,这个光谱是在样本中通过Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料与DNA结合得到的。

Vybrant DyeCycle Violet 染料/DNA结合物的荧光激发波峰和发射波峰分别为369 nm和437 nm。

图1.Vybrant DyeCycle Violet stain染料在TrisBorate-EDTA (TBE) Buffer(pH 8.3)

与DNA结合后的荧光激发光谱和发射光谱

 

材料

 

表1. 产品信息

产品 规格 浓度 储存* 稳定性
Vybrant DyeCycleViolet stain染料#V35003 200 μL 5 mM溶液溶于去离子水
  • 2-6°C
  • 请勿冷冻
  • 避光
若按指示储存,该试剂盒至少可稳定储存6个月。

实验次数:基于1 mL测试体积,试剂盒可用于200次左右流式实验。

荧光激发/发射波峰:与DNA结合后,Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料为369/437 nm。

 

需要但未提供的材料

  • 细胞和培养基
  • 流式管

 

实验方案

 

以下优化后的染色实验方案使用Jurkat细胞(人白血病T细胞系)在37°C,含10%胎牛血清(#FBS141的完全RPMI培养基(#609043中进行染色。实验方案适用于多数细胞类型。测试样本包含1×106个细胞/mL。实验中所用的培养基或缓冲液、细胞密度、细胞类型或其他因素都可能会对染色有影响,因此在预实验中,根据细胞类型、缓冲液和实验条件,尝试使用梯度染料浓度,从而确定最佳的染色实验方案。在每组实验中,流式实验样本应使用相同细胞数量,避免因样本间细胞数量不同引起荧光信号的显著差异。

 

如果Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料与其他染料组合完成流式多色实验,请先按说明指示将其他染料加到样本中,包括洗涤步骤。Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料是在上机前最后添加,并且在上样分析前不要洗涤或固定样本。

 

常规事项

 

 

  • 染色前,去除细胞悬液中的团块和杂质。在添加Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料后,在37°C下孵育细胞,请勿洗涤或固定细胞。

 

 

  • 提前确认流式细胞仪性能正常,且根据实验目的,建议在低流速下收集到足够的流式数据。在数据分析中,通过设门排除团块、杂质及死细胞,确保数据准确性;在分析DNA含量时,采用线性(Linear)信号查看及分析。还有,Alexa Fluor 488通道和PE通道可能需要补偿调节。

 

  • 人类和啮齿动物干细胞会分泌出Vybrant  DyeCycle  Violet染料,这是侧群细胞(Side population, SP)的检测原理;可以使用维拉帕米(Verapamil)、烟曲霉毒素C(Fumitermorgin C)或其他药物阻断分泌过程,可以更加准确地分析这些干细胞中的DNA含量。

 

Vybrant DyeCycle Violet stain染色实验方案

 

以下实验方案经优化,用于将完全培养基(RPMI #609043/ 10%胎牛血清 #FBS141)中悬浮培养的Jurkat细胞在37°C下进行Vybrant DyeCycle Violet stain染色。

 

1.从冰箱中取出Vybrant DyeCycle Violet stain(#V35003)染料,恢复至室温。


2.用完全培养基调整细胞浓度为1×106 个细胞/mL,按每管1 mL细胞悬液加到流式管中。


3.在每管中加入1 μL的Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料并充分混匀,使染料终浓度为5 μM。


4.在37°C下避光孵育30分钟。直至上机采集数据前将细胞始终保持在37°C条件。


5.不要洗涤或固定样本,直接上机检测样本。在流式细胞仪上,使用405 nm左右激发波长和440 nm左右发射波峰分析样本(图2),Vybrant DyeCycle Violet stain染料也可由紫外激光(UV)激发。


图2. Vybrant  DyeCycle  Violet  stain染料染色Jurkat活细胞后得出DNA含量分布直方图

G0/G1和G2/M周期的波峰被S期分隔开。该染料由紫光405 nm激发且使用440/40 nm带通滤光片检测

 

参考文献

1.Current Protocols in Cytometry, 7.0.1–7.27.7 (2004)

2.Practical Flow Cytometry, 4th Ed., Shapiro HM,Ed. (2003)

3.Methods Mol Biol 281, 301 (2004)

4.Cytometry A 58, 21 (2004)

5.Stem Cells 25, 1029 (2007).

2. 固定细胞的DNA含量分析

 

流式细胞术分析核酸是一种常见的应用。DNA含量的检测可以用来研究不同细胞群体的细胞周期和DNA倍体。在特定细胞群中,有三个主要细胞周期:G0/G1期(每个细胞含有一套成对的染色体)、S期(DNA合成期,DNA含量不等)和G2/M期(细胞分裂之前,每个细胞含有两套成对的染色体)[1-4]。可以使用DNA荧光染料对DNA进行检测,信号强度与DNA含量成正比。然后对这些染色细胞群进行流式细胞分析,获得各个细胞周期的直方图。

 

单参数DNA含量分析是一种成熟的检测方法,广泛用于肿瘤学、细胞生物学和分子生物学的研究。通过流式细胞术可实现多色细胞周期研究,可以替代488nm激光器使用其他激光器检测细胞周期,这样使得常用的488nm激光器用于其他靶标的检测。FxCycle™  Violet染料(4',6-二脒基-2-苯基吲哚二醋酸盐)可被常见的紫色激光激发,也可被紫外UV激光激发。在紫色激光上检测DNA含量,则可以将常用的488 nm激光用于检测其他指标,例如细胞周期蛋白、细胞周期蛋白依赖性激酶、细胞周期检查点、核蛋白和增殖标记物。FxCycle™ Violet染料优先结合dsDNA;这可能与小沟中的AT碱基对相关[5]。FxCycle™  Violet染料与dsDNA结合,可产生约20倍强度的荧[6]。

 

为了长期储存, 5瓶100 μg的固体染料可以在2–6°C下储存;为方便起见,小瓶溶于去离子水的储备液也在2–6°C下储存。

 

开始之前

 

实验中需要但未提供的试剂

  • 去离子水
  • 固定剂(例如酒精或甲醛)

 

制备储备液

向染料瓶中加入100 μL去离子水,浓度为1 mg/mL的FxCycle™ Violet染料储备液。充分混匀。于2–6°C下避光储存,此条件下FxCycle™ Violet染料至少可稳定储存6个月。

 

光谱特性

FxCycle™  Violet染料的荧光激发和荧光发射光谱如图1所示。与dsDNA结合后,荧光激发和发射波长分别为358/461 nm。FxCycle™  Violet染料可被流式细胞仪上常用的405 nm紫色激光或者UV激光激发。

图1.FxCycle™ Violet染料与dsDNA结合后的荧光激发和发射光谱。

 

实验方案

以下方案使用Jurkat T细胞系研发,但该方案适用于其他细胞类型。固定破膜剂、细胞密度、细胞类型变化和其他因素都可能影响染色效果。

 

在预实验中,应对特定细胞类型进行测试,梯度测试不同的染料浓度以获得最佳的染色浓度和实验条件。在进行细胞染色之前,应尽量确保去除细胞中的固定剂,但如有特殊需要,可以在添加破膜剂的同时加入FxCycle™ Violet染料进行染色。对于同一组实验,每个流式细胞样本的细胞数量应保持一致,因为样本间细胞数量的差异会导致荧光信号的显著差异。

 

如果用FxCycle™ Violet染料结合其他染料标记的指标进行多色分析,请先按照其他指标的生产商的说明(包括洗涤步骤)染色其他染料。FxCycle™ Violet染色应是最后一个步骤,并且在流式细胞分析之前不要洗涤样本。

 

常规事项

为使DNA含量细胞周期分析达到最佳效果,请注意以下事项:

 

  • 染色前去除细胞悬液中的细胞团块
  • 在使用前先确认流式细胞仪的功能正常
  • 应用荧光通道的线性参数(Linear)放大信号检测DNA含量
  • 在低流速下进行采集
  • 分析并采集足量的事件(events)用于数据分析
  • 当对细胞DNA含量分析细胞周期时, FxCycle™ Violet染料使用前必须先固定细胞

 

染色步骤

1.收集细胞样本。


2.根据经验证的最佳方法固定细胞。


3.洗涤细胞。在进行细胞染色之前,尽量将样本中的固定试剂去除干净。


4.使用合适的缓冲液,调节细胞样本浓度为1×106 个细胞/mL。


5.制备流式细胞样本,使每个样本含有1 mL细胞悬液。如果实验需要可以选择性地加入破膜试剂进行破膜处理。


6.向每个样本加入1μL FxCycle™ Violet(货号F10347)染料并充分混匀。


7.样本在室温或2–6°C下避光孵育30分钟。


8.使用流式细胞仪分析样本:使用405nm激光器和450/50带通或同等滤光片收集信号。


9.图2显示了使用FxCycle™ Violet染料进行DNA含量细胞周期分析获得的结果示例。


图2.HL-60早幼粒细胞经FxCycle™  Violet染料染色后获得的DNA含量直方图。HL-60细胞用酒精固定过夜、洗涤,然后重悬于0.1% Triton® X-100/PBS/1% BSA中,最后在室温下用FxCycle™  Violet染料染色30分钟。S期分布位于G0/G1和G2/M期直方图之间。使用450/50带通滤光片在405 nm激发光下进行分析。